越来越多的实验结果显示，神经炎症和多种神经退变性疾病(如阿尔兹海默症和帕金森病等)的发生相关度很大^[1-4]。小胶质细胞是神经并发炎症的一个重要的参与者^[5-6]。在健康的情况下，小胶质细胞可以维持大脑的微环境平衡，保护其神经元; 中枢神经系统受到损伤或感染时，小胶质细胞发生炎症反应性激活即M1极化，高表达炎性细胞因子，同时细胞形态发生改变，吞噬细胞碎片，利于损伤修复; 而过度激活的小胶质细胞则引起促炎性细胞因子大量增加，诱导慢性炎症并导致神经元死亡^[7-12]。集落刺激因子1受体(CSF1R)抑制剂PLX5622，可以阻断血小板衍生的生长因子家族配体CSF1与单核类细胞和外周巨噬细胞型细胞特异的酪氨酸激酶型受体CSF1R的结合，从而清除脑内的小胶质细胞。PLX5622不影响小鼠日常活动，在停用该药物1周后，脑内的小胶质细胞基本恢复正常水准^[12-15]。为了探究小胶质细胞的消除是否影响小鼠的学习与记忆，本研究采取PLX5622喂食清除小鼠脑内小胶质细胞^[16]，观察小胶质细胞的清除对正常的野生型小鼠空间型学习与记忆的影响。

1 材料与方法 1.1 实验动物及分组

SPF级12周龄的雄性C57BL/6小鼠16只，体质量(30±2)g，由北京维通-利华实验动物有限公司供应。小鼠于20 ℃、日夜循环光照状态下喂养，可随意进食、饮水、活动。随机将小鼠分为对照鼠粮喂食组(对照组)、PLX5622鼠粮喂食组(实验组)，各8只。PLX5622鼠粮(每千克含PLX5622量为1 200 mg)和对照鼠粮(不含PLX5622，其余成分与实验组一致)购自Plexxikon公司。

1.2 给药方法

实验开始前14 d启动PLX5622喂食或对照喂食，并在实验期间维持。喂食期间小鼠单笼饲养并每天抚慰2 min以降低其焦虑水平^[15]。小鼠每天定点定量喂食(每只4 g/d)，同时记录食用量。

1.3 Morris水迷宫实验

Morris水迷宫包括装有水的圆柱状水箱、隐匿在水平面下的圆台以及一系列视频主动拍摄和处理数据系统，可以用来评价小鼠的空间型学习与记忆能力。每只小鼠每天进行4次空间定位游泳训练，记下小鼠每天寻找水下圆台的逃避潜伏期，评价小鼠的空间型学习能力^[17]。连续训练6 d后进行为期60 s的空间型记忆测试，记录小鼠穿过圆台次数、象限探索时长的百分比、游泳速度等，以评价小鼠的空间型记忆^[18]。

1.4 荧光免疫组化检测

水迷宫实验完成后，两组小鼠以40 g/L多聚合甲醛经心灌注后取脑，固定4 h，放入含有300 g/L蔗糖的混合液中沉糖。用包埋剂OCT包住脑组织，快速冷冻、切片，切片厚度40 μm。将切片移到0.01 mol/L PBS混合液中保存。行常规荧光免疫组化检测：脑切片以0.01 mol/L PBS混合液洗净后，加抗体封闭液在常温摇床上封闭1 h，然后加一抗4 ℃摇床上孵育72 h; 以0.01 mol/L PBS混合液清洗3次后，加荧光二抗在常温摇床上孵育1~2 h(暗光下); 再以0.01 mol/L PBS混合液洗清干净后，将切片转移到载玻片上铺片、晾干，封片剂封片。应用Leica DMi8倒置荧光显微镜和10倍干物镜捕获荧光图像，Image J图像阈值测量工具对择定海马脑域(ROI)小胶质细胞染色密度进行量化分析。所用一抗NeuN抗体(1:1 000)和Iba1抗体(1:500)均购于美国Cell Signaling Technology公司，荧光二抗Alexa-568 goat anti-mouse IgG(1:2 000)和Alexa-488 goat anti-rabbit IgG(1:2 000)购自美国Invitrogen公司。

1.5 统计学处理

应用Graph Pad Prism 6软件进行统计学分析，计量资料结果以x±s表示，两组比较采取成组t检验; 多组数据比较采用双因素方差分析，然后采用Tukey’s多重对比法进行两两对比。以P < 0.05表示差异有统计学意义。

2 结果 2.1 两组小鼠空间型学习能力比较

双因素方差分析显示，训练天数和药物处理两种因素对小鼠的逃避潜伏期不存在交互作用(F=0.127, P>0.05)。药物处理对小鼠逃避潜伏期不存在作用，两组各时间逃避潜伏期比较差异无显著性(P>0.05)。训练天数对小鼠空间型学习能力有影响(F=11.940, P < 0.01)，两组小鼠第7天逃避潜伏期均较第1天缩短，差异有显著性(P < 0.01)。表明小鼠的空间型学习不受PLX5622投食的影响。见表 1。

2.2 两组小鼠空间型记忆能力对比

双因素方差分析显示, 药物处理和迷宫象限两种因素对小鼠的探索时长百分比有交互作用(F=8.473, P < 0.01)。药物处理对小鼠探索时长百分比不存在作用，两组各象限探索时长百分比差异无显著性(P>0.05)。迷宫象限对小鼠探索时长百分比有影响(F=111.400, P < 0.01)，实验组和对照组小鼠在圆台象限的探索时长百分比均显著高于其他3个象限，差异有统计学意义(P < 0.01)，说明经过6 d练习两组小鼠均获得了空间型记忆。两组圆台象限探索时长百分比比较，差异有显著性(t=3.556，P < 0.01);两组穿越圆台的次数及游泳速度比较，差异无显著性(P>0.05)。见表 2、3。

2.3 两组小鼠ROI小胶质细胞比较

小鼠ROI小胶质细胞Iba1免疫染色阳性(绿色荧光), 成熟神经元呈NeuN免疫染色阳性(红色荧光)。荧光定量分析结果显示，实验组小鼠ROI每平方毫米小胶质细胞的数目明显少于对照组(t=11.430, P < 0.01);而两组小鼠ROI成熟神经元数量差异无显著性(P>0.05)。见表 4。

3 讨论

小胶质细胞不仅是大脑的免疫型细胞，同时在大脑的发育、神经元的网络结构和功能稳态，以及中枢类神经受损与修复等生理过程中都起着重要的调节作用^[19]。小胶质细胞是脑中存在的巨噬细胞，但是由于其独特的表型和中枢神经系统中微环境的严格调节，小胶质细胞主要负责消除可能危害中枢神经系统的微生物、坏死细胞、多余的突触、蛋白质的聚集体以及其他颗粒和可溶性的抗原等^[20-21]。小胶质细胞是脑内促进炎性细胞因子产生的主要来源，是中枢性神经炎症的关键递质，可以诱导或调节广泛的细胞炎症反应。小胶质细胞的功能变化与老化以及神经变性相关度很高^{[5, 22-23]}。

有研究显示，小胶质细胞的存活离不开CSF1R信号; 而PLX5622是最新研制成功的特异度很高的CSF1R抑制剂，其特点是可口服，可透过血-脑脊液屏障，对小胶质细胞的清除率高，连续给小鼠喂食2周PLX5622可以清除脑中90%以上的小胶质细胞^[24]。同时，PLX5622还具有不影响小鼠基本生理活动和行为的特点^{[11, 25]}。

本研究通过投食PLX5622消除脑内小胶质细胞，采取Morris水迷宫实验评估小胶质细胞消除对小鼠空间型学习与记忆的影响，结果显示，与对照组比较，实验组小鼠脑内小胶质细胞数量显著减少，与相关研究结果相一致^{[12, 15]}。本文研究结果显示，海马内小胶质细胞清除对小鼠的空间型记忆力有一定的抑制作用，表现为实验组在圆台所在象限的探索时长的百分比显著低于对照组，说明生理状况下海马内小胶质细胞参与空间型记忆的调节。本文结果还显示，两组小鼠定位航行的圆台逃避的潜伏期和运动速度差异无显著性，两组小鼠空间探索时在圆台所在象限逗留的时长均较其他象限明显延长，表明PLX5622诱导的小胶质细胞清除并不影响小鼠的空间探索、运动协调、空间型学习与记忆获取。本文结果可为后续开展小胶质细胞对阿尔茨海默症等神经退变性疾病的影响及机制研究奠定基础。

综上所述，生理状态下海马区小胶质细胞对小鼠的空间型记忆有重要的调节作用。其分子和细胞机制需要深入的研究。衰老、神经变性和慢性应激都可能导致认知与情感障碍，同时伴随着小胶质细胞的异常激活和促炎性改变。小胶质细胞异常激活导致记忆受损已有不少报道^{[20, 26-31]}。因此，清除异常激活的小胶质细胞可能为认知障碍的治疗或干预提供新的思路和靶点。